Efectividad de Extractos Botánicos de Diez Plantas Sobre la Mortalidad y Repelencia de Larvas de Rhynchophorus palmarum L., Insecto Plaga del Pijuayo Bactris gasipaes Kunth en la Amazonía del Perú

La utilización masiva de insecticidas convencionales, y especialmente plaguicidas de amplio espectro, es costosa y trae consecuencias colaterales secundarias, como desarrollo de la resistencia de las plagas, contaminación ambiental, residuos tóxicos en el producto cosechado, aparición de nuevas plagas, eliminación de la entomofauna benéfica e intoxicación del operador (Briones, 1991; Hoss, 1999; Iannacone y Murrugarra, 2000; Iannacone y Reyes, 2001; Iannacone y Montoro, 2002; Simmonds et al., 2002). La utilización de extractos vegetales para el control de plagas tiene la ventaja de no provocar contaminación, debido a que estas sustancias son degradadas rápidamente en el medio (Benner, 1996; Iannacone y Lamas, 2002). De esta forma plantas con potencial biocida constituyen un componente importante de control, dentro del contexto de manejo integrado de plagas (Estrada y López, 1998; Iannacone y Montoro, 2002; Iannacone y Lamas, 2003).

Para la selección de las especies vegetales con potencial biocida se deben recopilar referencias bibliográficas de importancia local e internacional. Además es útil consultar literatura etnobotánica y de medicina popular (Cácereset al., 2000; Hellpap, 2000; Khambay, 2000).

Iannacone (2003) ha señalado que para el desarrollo tecnológico de un plaguicida botánico se deben estandarizar sus métodos de extracción y la propagación de las plantas. La selección de la especie de planta es el primer paso; uno de los métodos claves en la investigación de nuevos plaguicidas botánicos son los bioensayos. Estos bioensayos se emplean para estudiar las propiedades biocidas de las diferentes partes de las plantas (raíces, corteza, hojas, frutos, flores, etc.), la eficacia de los diferentes extractos y formulaciones, y el modo de acción de los ingredientes activos. Los bioensayos deben ser altamente sensitivos a las sustancias bioactivas, fáciles de manipular, baratos, de amplio espectro, y dar rápidos resultados (Iannacone, 2000).

Con relación a huancahuisacha (Aristolochia pilosa Kunth, Aristolochiaceae), no hay literatura publicada sobre los componentes, y efectos insecticidas y repelentes. Referencias etnobotánicas en Pucallpa, de huancahuisacha, la señalan con propiedades vomitivas (Diana Pérez, observación de la autora). Sólo se encuentra información sobre otras especies congenéricas a A. pilosa. Hu et al. (2004) mostraron ausencia de efectos toxicológicos y patológicos del género Aristolochia sobre la vejiga urinaria y el hígado de mamíferos. Sin embargo, numerosos estudios en mamíferos señalan efectos nefrotóxicos del ácido aristolóquico de Aristolochia spp. (Liu et al., 2003; Sato et al., 2004; Zhou et al., 2004). El extracto crudo de Aristolochia bracteata Retz. es usado en medicina tradicional como estimulante gástrico, en el tratamiento del cáncer, para la inflamación pulmonar y en picaduras de serpientes. Además, al igual que Aristolochia trilobata L., esta especie presenta propiedades antibacterianas (Camporese et al., 2003; Negi et al., 2003). Wu et al. (2002) y Shi et al. (2004) registran alcaloides con actividad fisiológica del grupo de las bisbenzilisoquinolinas en las raíces y tallos de Aristolochia elegans Mast. Priestap et al.(2003) han registrado aceites esenciales de las hojas, tallos aéreos y órganos subterráneos de Aristolochia argentina Gris. Fordyce (2001) indica que los alcaloides tóxicos llamados ácidos aristolóquicos son secuestrados de la planta Aristolochia californica Torrey, por las larvas de la mariposa Battus philenor L. (Lepidóptera: Papilionidae) con el fin de protegerse de sus depredadores. Nascimento et al. (2004) encontraron efectos insecticidas de los extractos acetónicos y etanólicos del tubérculo de Aristolochia pubescens (Willd.) sobre larvas de Anticarsia gemmatalis (Hubner) (Lepidóptera). La cubebina no mostró actividad sobre A. gemmatalis. El ácido aristolóquico y el ent-kaur-15-en-17-ol alargan el período larval. La eudesmina y el sesamin reducen la viabilidad de este período, produciendo malformaciones en los adultos.

Con relación a curare (Chondrodendron tomentosum Ruiz & Pavon, Menispermaceae) no se tienen referencias publicadas de su uso como insecticida o repelente. Sólo se conoce que C. tomentosum es empleada en la preparación del “ampi”, un fuerte veneno utilizado en la caza por las comunidades amazónicas peruanas (Schultes y Raffauf, 1990). Estos efectos tóxicos se deben a su principal alcaloide, la d-tubocurarina (Schultes y Raffauf, 1990; Desmarchelier y Witting, 2000). Este alcaloide actúa bloqueando la transmisión del nervio motor, causando relajación y parálisis flácida del músculo esquelético en el cuerpo (Taylor, 2005). La d-tubocurarina tiene tanta semejanza con la acetilcolina que compite con ella y ocupa su lugar en los receptores de la membrana pos sináptica de la placa neuromuscular, bloqueando así la transmisión del impulso nervioso del nervio hacia el músculo. En el Perú esta planta es usada etnobotánicamente como diurético, para edemas, como febrífuga, en orquitis, envenenamiento y cálculos renales (Taylor, 2005).

La oreja de tigre (Tradescantia zebrina Hort. ex Bosse, Commelinaceae), contiene saponinas responsables de su efecto cáustico, debido a un mucílago que ocasiona irritaciones en la piel (Diana Pérez, observación de la autora). Se le considera una planta de importancia ornamental; se le ha usado para la detección de radiaciones y para el biomonitoreo de la calidad del aire para detectar metales trazas (Isidoro et al., 2003, Kim et al., 2003; Sumita et al., 2003). Pérez y Iannacone (2004) señalan propiedades insecticidas de esta especie sobre formas larvarias deAnopheles benarrochi Gabaldon, Cova García y López 1941 (Díptera).

Ekabo et al. (1996) señalan propiedades antifúngicas y molusquicidas del “sacha yoco” (Paullinia clavigera Schltdl., Sapindaceae), debido a la concentración de las saponinas. Asimismo, Schultes y Raffauf (1990) indican la presencia de triterpenos, ß-sitosterol y de aceites etéreos en una planta de la misma familia, Serjania (Jacq.) Willd. (Sapindaceae), determinando que los primeros son responsables de actividad ictiotóxica. En la especie congenérica a P. clavigera, Paullinia pinnata L. se han registrado actividades molusquicidas contra Biomphalaria glabrata (Say), hospedero intermediario de Schistosoma mansoni (Sambon) (Meléndez y Carriles, 2002), posiblemente debido a flavonas glicosiladas (Abourashed et al., 1999). Pérez y Iannacone (2004) señalan propiedades insecticidas del sacha yoco sobre formas larvarias de A. benarrochi.

Se han registrado efectos cáusticos, vesicantes y tóxicos de ciertas especies del género Euphorbia (Pascual, 1996). Se considera a E. cotinifolia como un excelente ictiocida, en comparación con los géneros Lonchocarpus Kunth y Derris (Wallich) Benth. Se han citado varias especies de Euphorbia con propiedades bactericidas (Cowan, 1999). No se tienen referencias publicadas sobre efectos biocidas de yuquilla (Euphorbia cotinifolia L., Euphorbiaceae).

El achiote (Bixa Orellana L., Bixaceae), es una planta arbustiva, que se encuentra en el ecosistema forestal de los bosques tropicales amazónicos, y ahora es cultivado en el trópico a través de todo el mundo. Su tinte no es tóxico y no altera el sabor del alimento y también tiene varias aplicaciones en los alimentos, cosméticos e industrias farmacéuticas (Glew et al., 1997; Silveira et al., 2002; Lima et al., 2003). Salgado y Campos (2003) han evaluado el efecto fitonematicida de B. orellana sobre la eclosión y mortalidad de Meloidogyne exigua (Goeldi). Dentro de las plantas repelentes e insecticidas de importancia para Guyana, Surinam y Guyana Francesa se citan B. orellana y piñón blanco (Jathropa curcas L., Euphorbiaceae). En adición, Ramírez et al. (1988) hacen referencia sólo al efecto repelente de B. Orellana.

El objetivo del presente trabajo fue evaluar la mortalidad y repelencia de larvas de Rhynchophorus palmarum L., bajo la acción de diez plantas seleccionadas: ucullucuysacha (Heliotropium indicum L., Boraginaceae), floripondio (Brugmansia sp., Solanaceae), oreja de tigre (T. zebrina, Commelinaceae), piñón blanco (J. curcas, Euphorbiaceae), sacha yoco (P. clavigera, Sapindaceae), yuquilla (E. cotinifolia, Euphorbiaceae), achiote (B.orellana, Bixaceae), retama común (Cassia fistula L., Fabaceae), huancahuisacha (A. pilosa, Aristolochiaceae) y curare (C. tomentosum, Menispermaceae).